medlitГигиена и санитарияHygiene and Sanitation0016-99002412-0650Federal Scientific Center of Hygiene named after F.F. Erisman10.47470/0016-9900-2025-104-11-1539-1544dabwaymedlit-5306Research ArticleМЕТОДЫ ГИГИЕНИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙMETHODS OF HYGIENIC AND EXPERIMENTAL INVESTIGATIONSРазработка экспресс-метода количественного определения жирных кислот в моче на основе хромато-масс-спектрометрического анализаDeveloping an express method for quantification of fatty acids in urine based on chromatography-mass spectrometric analysishttps://orcid.org/0000-0002-2344-3037НурисламоваТатьяна ВалентиновнаNurislamovaTatiana V.

Доктор биол. наук, зав. отд. химико-аналитических методов исследования ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: nurtat@fcrisk.ru

DSc (Biology), head of the Department of chemical and analytical research methods, Federal Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: nurtat@fcrisk.ru

nurtat@fcrisk.ruhttps://orcid.org/0009-0003-8340-6726ТерентьевГеннадий ИльичTerentyevGennady I.

Науч. сотр. отд. химико-аналитических методов исследования ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: 2715743@mail.ru

Senior researcher, Department of chemical and analytical research methods, Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: 2715743@mail.ru

2715743@mail.ruhttps://orcid.org/0009-0002-4189-9588ЯкушеваЕкатерина АндреевнаYakushevaEkaterina A.

Химик лаб. методов газовой хроматографии отд. химико-аналитических методов исследования ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: yakusheva@fcrisk.ru

Chemist, Laboratory of gas chromatography methods, Department of chemical and analytical research methods, Federal Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: yakusheva@fcrisk.ru

yakusheva@fcrisk.ruhttps://orcid.org/0000-0003-3030-3275КолмогорцеваДарья ЮрьевнаKolmogortsevaDarya Yu.

Мл. науч. сотр. лаб. методов газовой хроматографии отд. химико-аналитических методов исследования ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: subbotina@fcrisk.ru

Junior researcher, Laboratory of gas chromatography methods, Department of chemical and analytical research methods, Federal Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: subbotina@fcrisk.ru

subbotina@fcrisk.ruhttps://orcid.org/0000-0002-7738-6832ЛирДарья НиколаевнаLirDarya N.

Канд. мед. наук, вед. научн. сотр. – зав. отд. анализа риска для здоровья, доцент, ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: lir@fcrisk.ru

PhD (Medicine), leading researcher, head of the Department of health risk analysis, Federal Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: lir@fcrisk.ru

lir@fcrisk.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3594-2650СуворовДмитрий ВладимировичSuvorovDmitry V.

Науч. сотр. отд. анализа риска для здоровья ФБУН «ФНЦ МПТ УРЗН», 614045, Пермь, Россия

e-mail: suvorov@fcrisk.ru

Researcher, Department of Health Risk Analysis, Federal Research Center for Medical and Preventive Technologies for Public Health Risk Management, Perm, 614045, Russian Federation

e-mail: suvorov@fcrisk.ru

suvorov@fcrisk.ruФБУН «Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения» РоспотребнадзораРоссияFederal Scientific Center for Medical and Preventive Health Risk Management TechnologiesRussian Federation2025201220251041115391544Copyright © Нурисламова Т.В., Терентьев Г.И., Якушева Е.А., Колмогорцева Д.Ю., Лир Д.Н., Суворов Д.В., 20252025Нурисламова Т.В., Терентьев Г.И., Якушева Е.А., Колмогорцева Д.Ю., Лир Д.Н., Суворов Д.В.Nurislamova T.V., Terentyev G.I., Yakusheva E.A., Kolmogortseva D.Y., Lir D.N., Suvorov D.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.rjhas.ru/jour/article/view/5306Введение

Введение. Количественное определение в биологических средах организма жирных кислот (ЖК) позволяет оценить их поступление с пищей, участие в биохимических процессах и роль в физиологических функциях, таких как нормальная работа мозга, сердца, а также здоровье кожи и волос.

Цель исследования – разработка экспресс-метода количественного определения жирных кислот в моче на основе хромато-масс-спектрометрического анализа для оценки пищевого статуса.

Материалы и методы

Материалы и методы. При подготовке проб мочи к химическому анализу жирных кислот проводили щелочное метилирование, обрабатывая биопробы метилатом калия, что позволило быстро и количественно метилировать как свободные жирные кислоты, так и триглицериды. Для разделения эфиров жирных кислот применяли капиллярную колонку с неподвижной жидкой фазой FFAP с программируемым режимом нагрева до температуры плюс 70–245 °С. Масс-спектрометр – квадрупольный, с ионизацией электронами (70 эв).

Результаты

Результаты. Разработанный экспресс-метод на основе ХМС позволяет изучать состав ЖК в моче, идентифицируя 34 их производных в диапазоне концентраций от 0,004 до 9,975 мкг/см3. Экспресс-метод характеризуется высоким пределом количественного определения (0,01 мкг/см3) с требуемой точностью. В процессе исследований обнаружены максимальные концентрации жирных кислот – эйкозатриеновой (у 100% здоровых лиц, 3,608 мкг/см3, диапазон концентраций: min 1,716 мкг/см3, max 9,975 мкг/см3) и трикозановой (у 91,2% здоровых лиц, 0,351 мкг/см3, диапазон концентраций: min 0,004 мкг/см3, max 2,531 мкг/см3).

Ограничения исследования могут быть связаны с необходимостью исключения определения неполного спектра жирных кислот, таких как оксикислоты.

Заключение

Заключение. Метаболомный анализ мочи по жирнокислотному составу для оценки пищевого статуса и определения биомаркёров, характеризующих изменения алиментарного фактора, может стать перспективным направлением исследований.

Соблюдение этических стандартов. Исследование одобрено локальным этическим комитетом ФБУН «Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения» Роспотребнадзора (протокол заседания № 1 от 21.04.2025 г.). Все участники дали информированное добровольное письменное согласие на участие в исследовании.

Участие авторов

Участие авторов: Нурисламова Т.В., Лир Д.Н. – концепция и дизайн исследования, редактирование; Терентьев Г.И. – сбор и обработка материала, анализ полученных данных, написание текста; Субботина Д.Ю., Якушева Е.А. – сбор и обработка материала, анализ полученных данных; Суворов Д.В. – сбор и обработка материала. Все соавторы – утверждение окончательного варианта статьи, ответственность за целостность всех её частей.

Конфликт интересов

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов в связи с публикацией данной статьи.

Финансирование

Финансирование. Исследование не имело финансовой поддержки.

Поступила

Поступила: 30.09.2025 / Поступила после доработки: 24.10.2025 / Принята к печати: 03.11.2025 / Опубликована: 19.12.2025

Introduction

Introduction. Quantitative determination of fatty acids (FA) in biological fluids allows assessing of dietary intake, their role in biochemical processes, physiological functions, such as normal brain and heart function.

Objective

Objective. To develop a rapid method for the quantitative determination of fatty acids in urine based on chromatograph mass spectrometry analysis for assessing nutritional status.

Materials and Methods

Materials and Methods. Preparation of urine samples for chemical analysis of fatty acids included alkaline methylation by treating the biosample with potassium methylate, which enabled rapid and quantitative methylation of both free fatty acids and triglycerides. A capillary column with an FFAP with a programmable heating mode of 70–245 °C was used to separate fatty acid esters. The quadrupole mass spectrometer with electron ionization.

Results

Results. The developed rapid method based on chromatographic mass spectrometry (CMS) allows analysing the fatty acid composition in urine, identifying 34 of their derivatives in a concentration range from 0.004 to 9.975 µg/cm³. The conducted studies revealed the following maximum fatty acid concentrations: eicosatrienoic acid (3.608 µg/cm3) in 100% and tricosanoic acid (0.351 µg/cm3) in 91.2% of healthy individuals.

Limitations

Limitations. Study limitations may be related to the need to exclude the determination of an incomplete spectrum of fatty acids, such as hydroxy acids.

Conclusion

Conclusion. Metabolomic analysis of urine for FA composition may be a promising direction for assessing nutritional status and identifying biomarkers characterizing changes in alimentary factors.

Compliance with ethical standards. The study was approved by the local ethics committee of the Rospotrebnadzor’s Federal Scientific Center for Medical and Preventive Health Risk Management Technologies (the meeting protocol No. 3 dated March 28, 2025). All participants gave informed voluntary written consent to participate in the study.

Contribution

Contribution: Nurislamova T.V., Lear D.N. – concept, study design, editing; Terentyev G.I. – collection and treatment of material, analysis of obtained data, writing the text; Subbotina D.Yu., Yakusheva E.A. – collection and treatment of material, analysis of obtained data; Suvorov D.V. – collection and treatment of material. All authors are responsible for the integrity of all parts of the manuscript and approval of the manuscript final version.

Conflict of interest

Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.

Funding

Funding. The study had no sponsorship.

Received

Received: September 9, 2025 / Revised: October 24, 2025 / Accepted: November 3, 2025 / Published: December 19, 2025

жирные кислотыэкспресс-методхромато-масс-спектрометрияопределение в мочепищевой статусfatty acidsrapid methodChromatography-mass spectrometrydetermination in urinenutritional statusReferencesТитов В.Н. Среднецепочечные жирные кислоты: содержание в пище, физиология, особенности метаболизма и применение в клинике. Вопросы питания. 2012; 81(6): 27–36. https://elibrary.ru/putcvhTitov V.N. Middle-chain fatty acids: their dietary content, physiology, specific metabolism and clinical application. Voprosy pitaniya. 2012; 81(6): 27–36. https://elibrary.ru/putcvh (in Russian)Khamis M.M., Adamko D.J., El-Aneed A. Mass spectrometric based approaches in urine metabolomics and biomarker discovery. Mass Spectrom. Rev. 2017; 36(2): 115–34. https://doi.org/10.1002/mas.21455Khamis M.M., Adamko D.J., El-Aneed A. Mass spectrometric based approaches in urine metabolomics and biomarker discovery. Mass Spectrom. Rev. 2017; 36(2): 115–34. https://doi.org/10.1002/mas.21455Платонова А.Г., Осипов Г.А., Бойко Н.Б., Кириллова Н.В., Родионов Г.Г. Хромато-масс-спектрометрическое исследование микробных жирных кислот в биологических жидкостях человека и их клиническая значимость. Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 60(12): 46–55. https://elibrary.ru/vhthwnPlatonova A.G., Osipov G.A., Boiko N.B., Kirillova N.V., Rodionov G.G. The chromatography-mass spectrometry analysis of microbial fatty acids in human biological fluids and their clinical significance. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2015; 60(12): 46–55. https://elibrary.ru/vhthwn (in Russian)Писанов Р.В., Шипко Е.С., Дуванова О.В., Симакова Д.И. Идентификация микроорганизмов с применением газовой хромато-масс-спектрометрии. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020; (4): 356–62. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-4-8 https://elibrary.ru/yzazdiPisanov R.V., Shipko E.S., Duvanova O.V., Simakova D.I. Identification of microorganisms using gas chromato-mass spectrometry. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. 2020; (4): 356–62. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-4-8 https://elibrary.ru/yzazdi (in Russian)Петров С.М., Филатов С.Л., Михайличенко М.С., Подгорнова Н.М. Современное состояние микробиологического производства некоторых пищевых органических кислот. Актуальная биотехнология. 2024; (3): 31–5. https://doi.org/10.20914/2304-4691-2024-3-31-35 https://elibrary.ru/lzghymPetrov S.M., Filatov S.L., Mikhailichenko M.S., Podgornova N.M. The current state of microbiological production of some food organic acids. Aktual’naya biotekhnologiya. 2024; (3): 31–5. https://doi.org/10.20914/2304-4691-2024-3-31-35 https://elibrary.ru/lzghym (in Russian)Di Lorenzo R.D., Serra I., Porro D., Branduardi P. State of the art on the microbial production of industrially relevant organic acids. Catalysts. 2022; 12(2): 234. https://doi.org/10.3390/catal12020234Di Lorenzo R.D., Serra I., Porro D., Branduardi P. State of the art on the microbial production of industrially relevant organic acids. Catalysts. 2022; 12(2): 234. https://doi.org/10.3390/catal12020234Culver S.A., Hargett S.R., Balugo J.L.L.Q., Gildea J.J., Harris T.E., Siragy H.M. Nephron specific ATP6AP2 knockout increases urinary excretion of fatty acids and decreases renal cortical megalin expression. Sci. Rep. 2024; 14(1): 18724. https://doi.org/10.1038/s41598-024-69749-xCulver S.A., Hargett S.R., Balugo J.L.L.Q., Gildea J.J., Harris T.E., Siragy H.M. Nephron specific ATP6AP2 knockout increases urinary excretion of fatty acids and decreases renal cortical megalin expression. Sci. Rep. 2024; 14(1): 18724. https://doi.org/10.1038/s41598-024-69749-xWang R., Zhang J., Ren H., Qi S., Xie L., Xie H., et al. Dysregulated palmitic acid metabolism promotes the formation of renal calcium-oxalate stones through ferroptosis induced by polyunsaturated fatty acids/phosphatidic acid. Cell Mol. Life Sci. 2024; 81(1): 85. https://doi.org/10.1007/s00018-024-05145-yWang R., Zhang J., Ren H., Qi S., Xie L., Xie H., et al. Dysregulated palmitic acid metabolism promotes the formation of renal calcium-oxalate stones through ferroptosis induced by polyunsaturated fatty acids/phosphatidic acid. Cell Mol. Life Sci. 2024; 81(1): 85. https://doi.org/10.1007/s00018-024-05145-yDittharot K., Jittorntam P., Wilairat P., Sobhonslidsuk A. Urinary metabolomic profiling in chronic hepatitis B viral infection using gas chromatography/mass spectrometry. Asian Pac. J. Cancer Prev. 2018; 19(3): 741–8. https://doi.org/10.22034/apjcp.2018.19.3.741Dittharot K., Jittorntam P., Wilairat P., Sobhonslidsuk A. Urinary metabolomic profiling in chronic hepatitis B viral infection using gas chromatography/mass spectrometry. Asian Pac. J. Cancer Prev. 2018; 19(3): 741–8. https://doi.org/10.22034/apjcp.2018.19.3.741Course C.W., Lewis P.A., Kotecha S.J., Cousins M., Hart K., Heesom K.J., et al. Similarities of metabolomic disturbances in prematurity-associated obstructive lung disease to chronic obstructive pulmonary disease. Sci. Rep. 2024; 14(1): 23294. https://doi.org/10.1038/s41598-024-73704-1Course C.W., Lewis P.A., Kotecha S.J., Cousins M., Hart K., Heesom K.J., et al. Similarities of metabolomic disturbances in prematurity-associated obstructive lung disease to chronic obstructive pulmonary disease. Sci. Rep. 2024; 14(1): 23294. https://doi.org/10.1038/s41598-024-73704-1Jiang S., Zhou Y., Gao J., Jin S., Pan G., Jiang Y. Urinary metabolomic profiles uncover metabolic pathways in children with asthma. J. Asthma. 2024; 61(10): 1306–15. https://doi.org/10.1080/02770903.2024.2338865Jiang S., Zhou Y., Gao J., Jin S., Pan G., Jiang Y. Urinary metabolomic profiles uncover metabolic pathways in children with asthma. J. Asthma. 2024; 61(10): 1306–15. https://doi.org/10.1080/02770903.2024.2338865Dasí-Navarro N., Lombardi S., Vila-Donat P., Llop S., Vioque J., Soler-Blasco R., et al. Metabolomic profiling of human urine related to mycotoxin exposure. Toxins (Basel). 2025; 17(2): 75. https://doi.org/10.3390/toxins17020075Dasí-Navarro N., Lombardi S., Vila-Donat P., Llop S., Vioque J., Soler-Blasco R., et al. Metabolomic profiling of human urine related to mycotoxin exposure. Toxins (Basel). 2025; 17(2): 75. https://doi.org/10.3390/toxins17020075Kar A., Ghosh P., Parta P., Chini D.S, Nath A.K., Saha J.K., et al. Omega-3 fatty acids mediated Cellular signaling and its regulation in Human Health. Clin. Nutr. Open Sci. 2023; 52: 72–86. https://doi.org/10.1016/j.nutos.2023.10.004Kar A., Ghosh P., Parta P., Chini D.S, Nath A.K., Saha J.K., et al. Omega-3 fatty acids mediated Cellular signaling and its regulation in Human Health. Clin. Nutr. Open Sci. 2023; 52: 72–86. https://doi.org/10.1016/j.nutos.2023.10.004Chen J., Liu H. Nutritional indices for assessing fatty acids: a mini-review. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(16): 5695. https://doi.org/10.3390/ijms21165695Chen J., Liu H. Nutritional indices for assessing fatty acids: a mini-review. Int. J. Mol. Sci. 2020; 21(16): 5695. https://doi.org/10.3390/ijms21165695Harwood J.L. Polyunsaturated fatty acids: conversion to lipid mediators, roles in inflammatory diseases and dietary sources. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(10): 8838. https://doi.org/10.3390/ijms24108838Harwood J.L. Polyunsaturated fatty acids: conversion to lipid mediators, roles in inflammatory diseases and dietary sources. Int. J. Mol. Sci. 2023; 24(10): 8838. https://doi.org/10.3390/ijms24108838Zhou X., Zhu X., Zeng H. Fatty acid metabolism in adaptive immunity. FEBS J. 2023; 290(3): 584–99. https://doi.org/10.1111/febs.16296Zhou X., Zhu X., Zeng H. Fatty acid metabolism in adaptive immunity. FEBS J. 2023; 290(3): 584–99. https://doi.org/10.1111/febs.16296Rosa F., Mercer K.E., Lin H., Sims C.R., Pack L.M., Goode G., et al. Early infant formula feeding impacts urinary metabolite profile at 3 months of age. Nutrients. 2020; 12(11): 3552. https://doi.org/10.3390/nu12113552Rosa F., Mercer K.E., Lin H., Sims C.R., Pack L.M., Goode G., et al. Early infant formula feeding impacts urinary metabolite profile at 3 months of age. Nutrients. 2020; 12(11): 3552. https://doi.org/10.3390/nu12113552Баранов В.М., Осипов Г.А., Мухамедиева Л.Н., Белобородова Н.В., Пахомова А.А., Ильин В.К. и др. Оценка микроэкологического статуса человека методом хромато-масс-спектрометрии; 2009. Доступно: https://propionix.ru/f/otsenka_mikroekologicheskogo_statusa_cheloveka_metodom_khromato-mass-spektrometrii.pdfBaranov V.M., Osipov G.A., Mukhamedieva L.N., Beloborodova N.V., Pakhomova A.A., Ilin V.K., et al. Assessment of a person’s microecological status by chromatography-mass spectrometry; 2009. Available at: https://propionix.ru/f/otsenka_mikroekologicheskogo_statusa_cheloveka_metodom_khromato-mass-spektrometrii.pdf (in Russian)Айгумов М.Ш., Савчук С.А. Подход к оптимизации параметров масс-спектрометрического детектирования при идентификации сверхмалых количеств высокотоксичных веществ. Журнал аналитической химии. 2025; 80(2): 149–60. https://elibrary.ru/adwualAigumov M.Sh., Savchuk S.A. Approach to optimization of mass spectrometric detection parameters for identification of ultra-small amounts of highly toxic substances. Zhurnal analiticheskoi khimii. 2025; 80(2): 149–60. https://elibrary.ru/adwual (in Russian)Меринов А.В., Журба О.М., Алексеенко А.Н., Кудаева И.В. Содержание жирных кислот в плазме крови работников с вибрационной болезнью. Гигиена и санитария. 2023; 102(9): 928–33. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2023-102-9-928-933 https://elibrary.ru/zlmtryMerinov A.V., Zhurba O.M., Alekseenko A.N., Kudaeva I.V. Levels of fatty acids in blood plasma in workers with vibration disease. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal). 2023; 102(9): 928–33. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2023-102-9-928-933 https://elibrary.ru/zlmtry (in Russian)Ciucanu C.I., Vlad D.C., Ciucanu I., Dumitraşcu V. Selective and fast methylation of free fatty acids directly in plasma for their individual analysis by gas chromatography-mass spectrometry. J. Chromatogr. A. 2020; 1624: 461259. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2020.461259Ciucanu C.I., Vlad D.C., Ciucanu I., Dumitraşcu V. Selective and fast methylation of free fatty acids directly in plasma for their individual analysis by gas chromatography-mass spectrometry. J. Chromatogr. A. 2020; 1624: 461259. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2020.461259Engler M.M., Engler M.B. Omega-3 fatty acids: role in cardiovascular health and disease. J. Cardiovasc. Nurs. 2006; 21(1): 17–24, quiz 25-6. https://doi.org/10.1097/00005082-200601000-00005Engler M.M., Engler M.B. Omega-3 fatty acids: role in cardiovascular health and disease. J. Cardiovasc. Nurs. 2006; 21(1): 17–24, quiz 25-6. https://doi.org/10.1097/00005082-200601000-00005Kapoor B., Kapoor D., Gautam S., Singh R., Bhardwaj S. Dietary Polyunsaturated Fatty Acids (PUFAs): uses and potential health benefits. Curr. Nutr. Rep. 2021; 10(3): 232–42. https://doi.org/10.1007/s13668-021-00363-3Kapoor B., Kapoor D., Gautam S., Singh R., Bhardwaj S. Dietary Polyunsaturated Fatty Acids (PUFAs): uses and potential health benefits. Curr. Nutr. Rep. 2021; 10(3): 232–42. https://doi.org/10.1007/s13668-021-00363-3Воловик В.Т., Леонидова Т.В., Коровина Л.М., Блохина Н.А., Касарина Н.П. Сравнение жирнокислотного состава различных пищевых масел. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2019; (5): 147–52. https://elibrary.ru/jukllqVolovik V.T., Leonidova T.V., Korovina L.M., Blokhina N.А., Kasarina N.P. Comparison of fatty acid composition of different edible oils. Mezhdunarodnyi zhurnal prikladnykh i fundamental’nykh issledovanii. 2019; (5): 147–52. https://elibrary.ru/jukllq (in Russian)de Carvalho C.C.C.R., Caramujo M.J. The various roles of fatty acids. Molecules. 2018; 23(10): 2583. https://doi.org/10.3390/molecules23102583de Carvalho C.C.C.R., Caramujo M.J. The various roles of fatty acids. Molecules. 2018; 23(10): 2583. https://doi.org/10.3390/molecules23102583Мухутдинов Р.Р. Изучение функциональных свойств новых видов растительных масел. Международная научно-практическая конференция, посвященная памяти Василия Матвеевича Горбатова. 2018; (1): 173–6. https://elibrary.ru/yozatbMuhutdinov R.R., Pilipenko T.V. A study on the functional properties of new types of vegetable oils. Mezhdunarodnaya nauchno-prakticheskaya konferentsiya, posvyashchennaya pamyati Vasiliya Matveevicha Gorbatova. 2018; (1): 173–6. https://elibrary.ru/yozatb (in Russian)Nagy K., Tiuca I.D. Importance of fatty acids in physiopathology of human body. In: Catala A., ed. Fatty Acids. IntechOpen; 2017. https://doi.org/10.5772/67407Nagy K., Tiuca I.D. Importance of fatty acids in physiopathology of human body. In: Catala A., ed. Fatty Acids. IntechOpen; 2017. https://doi.org/10.5772/67407Савельева Е.И. Сферы применения биоаналитической хромато-масс-спектрометрии. Журнал аналитической химии. 2021; 76(10): 937–51. https://doi.org/10.31857/S0044450221080132 https://elibrary.ru/wqydkgSavelieva E.I. Scopes of bioanalytical chromatography–mass spectrometry. Journal Of Analytical Chemistry. 2021; 76(10): 937–51. https://doi.org/10.1134/S106193482108013X https://elibrary.ru/hhraddГНЦ РФ ИМБП РАН «Оценка микроэкологического статуса человека методом хромато-масс-спектрометрии». М.; 2008.State Scientific Center of the Russian Federation Institute of Medical and Biological Problems of the Russian Academy of Sciences "Assessment of the Microecological Status of a Person by Chromatography-Mass Spectrometry". Moscow; 2008. (in Russian)Мамедов И.С., Сухоруков В.С., Золкина И.В., Савина М.И., Николаева Е.А. Оценка масс-спектрометрических показателей для дифференциальной диагностики наследственных нарушений обмена органических кислот у детей. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2019; 64(1): 61–7. https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-1-61-67 https://elibrary.ru/yzdvspMamedov I.S., Sukhorukov V.S., Zolkina I.V., Savina M.I., Nikolaeva E.A. Evaluation of mass spectrometric indicators for the differential diagnosis of inherited disorders of organic acid metabolism in children. Rossiiskii vestnik perinatologii i pediatrii. 2019; 64(1): 61–7. https://doi.org/10.21508/1027-4065-2019-64-1-61-67 https://elibrary.ru/yzdvsp (in Russian)Alex A., Abbott K.A., McEvoy M., Schofield P.W., Garg M.L. Long-chain omega-3 polyunsaturated fatty acids and cognitive decline in non-demented adults: a systematic review and meta-analysis. Nutr. Rev. 2020; 78(7): 563–78. https://doi.org/10.1093/nutrit/nuz073Alex A., Abbott K.A., McEvoy M., Schofield P.W., Garg M.L. Long-chain omega-3 polyunsaturated fatty acids and cognitive decline in non-demented adults: a systematic review and meta-analysis. Nutr. Rev. 2020; 78(7): 563–78. https://doi.org/10.1093/nutrit/nuz073

The authors declare that there are no conflicts of interest present.