Preview

Гигиена и санитария

Расширенный поиск

Совершенствование методических подходов к оценке эффективности дезинфекционного оборудования в системе обеспечения качества и безопасности эндоскопических вмешательств

https://doi.org/10.47470/0016-9900-2019-98-12-1444-1450

Полный текст:

Аннотация

Введение. Одним из основных факторов риска возникновения ИСМП при эндоскопических манипуляциях является некачественная обработка эндоскопов. С целью повышения качества и безопасности медицинской помощи при обработке гибких эндоскопов широко используются специальные установки. Однако для подтверждения эффективности такого оборудования необходимо проведение лабораторно-экспериментальных исследований.

Материал и методы. В исследованиях использовали опытный образец установки отечественного производства, предназначенный для проведения этапов окончательной очистки и ДВУ гибких эндоскопов, с использованием образцов средств на основе различных действующих веществ. В качестве тест-изделий использовали гибкие эндоскопы. Для имитации органического загрязнения применяли донорскую кровь. Для искусственной контаминации тест-изделий использовали культуру тест-микроорганизма Mycobacterium terrae.

Результаты. В результате изучения эффективности окончательной очистки и ДВУ гибких эндоскопов в установке при их однократном использовании были установлены отрицательные азопирамовые пробы со всех смывов с эндоскопов, а также отсутствие роста тест-микроорганизма.

При проведении исследований эффективности ДВУ при многократном использовании рабочих растворов была установлена эффективность обработки в течение 6–8 циклов. После 12-го цикла обработки наблюдается характерный рост тест-микроорганизма в смывах. Эффективность обеззараживания эндоскопов при многократном использовании дезинфицирующего средства на основе надуксусной кислоты подтверждена в течение рабочей смены после 8 циклов, а в течение срока годности рабочего раствора на 5-е сутки было установлено снижение концентрации ДВ более чем в 10 раз.

Заключение. При изучении эффективности обеззараживания эндоскопов при многократном использовании дезинфицирующего средства установлено, что отсутствие роста тест-микроорганизма достигается при условии эффективной концентрации рабочего раствора, что во многом зависит от его начальной концентрации. Проведённые исследования свидетельствуют о необходимости изучения эффективности применения установок с целью определения условий, обеспечивающих эффективность и безопасность медицинской помощи при эндоскопических вмешательствах.

Об авторах

А. Ю. Скопин
ФБУН «Научно-исследовательский институт дезинфектологии» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)
Россия


Т. В. Гололобова
ФБУН «Научно-исследовательский институт дезинфектологии» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; ФГБОУ ДПО Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия


Елена Александровна Матвеева
ФБУН «Научно-исследовательский институт дезинфектологии» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека; ФГБОУ ДПО Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Мл. науч. сотр. лаб. проблем стерилизации ФБУН НИИ Дезинфектологии Роспотребнадзора, 117246, Москва.

e-mail: Eleen.matveeva@yandex.ru



А. О. Иванова
ФБУН «Научно-исследовательский институт дезинфектологии» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Россия


Список литературы

1. Маады А.С., Алексеев К.И., Осипов А.С., Васильев И.В. Инновационные эндоскопические технологии в многопрофильном медицинском учреждении. Вестник Национального медико-хирургического центра им. Н.И. Пирогова. 2017; 4: 47-50.

2. Прохорова Ю. Перспективы развития эндоскопии заключаются в её широком внедрении в клиническую практику, модернизации существующих и открытии новых отделений, оснащённых передовой техникой. Гастроэнтерология. 2018; 147 (3): 6-7.

3. Манахова Е.О., Олевская Е.Р., Максимова В.В. Опыт внедрения технологии автоматизированной обработки гибких эндоскопов в отделении эндоскопии ОДЦ. Поликлиника. 2008; 3(3): 38.

4. Гренкова Т.А., Селькова Е.П., Чижов А.И. и соавт. Риск передачи ВИЧ и вируса гепатита С во время эндоскопических манипуляций. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2009; 1: 26-30.

5. Зуева Л.П., Голиков В.Г., Колосовская Е.Н. Пути профилактики инфицирования пациентов при выполнении эндоскопических манипуляций. Стерилизация и госпитальные инфекции. 2006; 2: 28-31.

6. Birniе G.G., Quigley E.M., Clements G.B. et al. Endoscopic transmission of hepatitis B virus. Gut. 1983 Feb; 24 (2): 171-174. https://doi.org/10.1136/gut.24.2.171

7. Jung M., Beilenhoff U. Hygiene: The Looming Achilles Heel in Endoscopy. Visc Med. 2016 Feb; 32(1): 21-8. https://doi.org/10.1159/000443626

8. Гренкова Т.А. Проблемы обеспечения эпидемиологической безопасности нестерильных эндоскопических вмешательств. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2015; 85 (6): 48-52

9. Rahman M.R., Perisetti A., Coman R., Bansal P., Chhabra R., Goyal H. Duodenoscope-Associated Infections: Update on an Emerging Problem. Dig Dis Sci. 2019 Jun; 64 (6): 1409-18. https://doi.org/10.1007/s0620-018-5431-7

10. Griffiths P.A., Babb J.R., Bradley C.R., Fraise A.P. Glutaraldehyde-resistant Mycobacterium chelonae from endoscope washer disinfectors. Journal of Applied Microbiology. 1997; 82 (4): 519-26. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.1997.00171.x

11. McCafferty C.E., Aghajani M.J., Abi-Hanna D., Gosbell I.B., Jensen S.O. An update on gastrointestinal endoscopy-associated infections and their contributing factors. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2018; Oct; 17(1): 36. https://doi.org/10.1186/s12941-018-0289-2

12. Иванова А.О., Меркульева А.Д. О контроле качества рабочих растворов дезинфицирующих средств. Дезинфекционное дело. 2018; 1(103): 17-21.

13. Андреев С.В., Иванова А.О., Меркульева А.Д., Беляев Е.С. Методические подходы к контролю качества дезинфицирующих средств и их рабочих растворов. Контроль качества продукции. 2018; 7: 18-24.

14. Гренкова Т.А., ред. Е.П. Селькова. Эпидемиологическая безопасность нестерильных эндоскопических вмешательств. Н. Новгород: Ремедиум Приволжье; 2018.

15. Осипенко Е.В., Кастыро И.В. Современные и традиционные методы дезинфекции высокого уровня эндоскопов, применяемых в оториноларингологической практике. Российская оториноларингология. 2014; 69 (2): 139-47.

16. Beilenhoff U., Neumann C.S., Rey J.F. et. al. ESGE + ESGENA guideline: Cleaning and disinfection in gastrointestinal endoscopy. Endoscopy. 2008; 40(11): 939-57. https://doi.org/10.1055/s-2008-1077722

17. Society of Gastroenterology Nurses and Associates, Inc. SGNA Standards: standards of infection control in reprocessing of flexible gastrointestinal endoscopes. Gastroenterol Nurs. 201; 33 (1): 70-80. https://doi.org/10.1097/SGA.0b013e3181c3992e

18. Никишина Д.А. Преимущества использования автоматических моечных машин при обработке эндоскопов. Альманах сестринского дела. 2011; 1-2: 34-6

19. ASGE Technology Committee, Parsi M.A., Sullivan S.A. et. al. Automated endoscope reprocessors. Gastrointest Endosc. 2016; 84 (6): 885-92. https://doi.org/10.1016/j.gie.2016.08.025

20. Пипия Л.К., Елкин А.Г. Применение новых технологий в здравоохранении. Наука за рубежом. 2018; 2-3; 68.

21. Рахманин Ю.А., Калинина Н.В., Гапонова Е.Б., Загайнова А.В., Недачин А.Е., Доскина Т.В. Гигиеническая оценка безопасности и эффективности использования ультрафиолетовых установок закрытого типа для обеззараживания воздушной среды в помещениях медицинских организаций стационарного типа. Гигиена и санитария. 2019; 98 (8): 804-10. https://doi.org/10.18821/0016-9900-2019-98-8-804-810

22. Funk S.E., Reaven N.L. High-level endoscope disinfection processes in emerging economies: financial impact of manual process versus automated endoscope reprocessing. J Hosp Infect. 2014; 86 (4): 250-4. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2014.01.007

23. Chenjiao W., Hongyan Z., Qing G., Xiaoqi Z., Liying G., Ying F. In-Use Evaluation of Peracetic Acid for High-Level Disinfection of Endoscopes. Gastroenterol Nurs. 2016; 39 (2):116-20. https://doi.org/10.1097/SGA.0000000000000192

24. Alfa M.J., Sitter D.L. In-hospital evaluation of orthophthalaldehyde as a high-level disinfectant for flexible endoscopes. Journal of Hospital Infection. 1994; 26 (1): 15-26. https://doi.org/10.1016/0195-6701(94)90075-2

25. Babb J.R., Bradley C.R., Ayliffe G.A.J. Sporicidal activity of glutaraldehydes and hypochlorites and other factors influencing their selection for the treatment of medical equipment. J Hosp Infect. 1980; 1 (1): 63-75. https://doi.org/10.1016/0195-6701(80)90033-x

26. Эпштейн А.Е. К вопросу о стабильности дезинфицирующих препаратов. Сб. науч. тр.: Научные основы дезинфекции и стерилизации. 1991: 74-7.

27. Лярский П.П., Глейберман С.Е., Панкратова Г.Н., Ярославская Л.А. Токсико-гигиенические аспекты применения дезинфицирующих средств на основе перекиси водорода и её производных. В кн.: Материалы конференции «Химия и технология дезинфицирующих средств для медицины, пищевой промышленности и сельского хозяйства на основе перекиси водорода и её производных». 1982: 22-5.

28. Mbithi J.N., Springthorpe V.S., Sattar S.A. et al. Bactericidal, virucidal, and mycobactericidal activities of reused alkaline glutaraldehyde in an endoscopy unit. J Clin Microbiol. 1993; 31 (11): 2988-95.

29. Fraud S., Maillard J-Y., Russell A.D. Comparison of the mycobactericidal activity of orthophthalaldehyde, glutaraldehyde, and other dialdehydes by a quantitative suspension test. J Hosp Infect. 2001; 48 (3): 214-21. https://doi.org/10.1053/jhin.2001.1009

30. Herruzo-Cabrera R., Vizcaino-Alcaide M.J., Rodriquez J. Comparison of the microbicidal efficacy on germ carriers of several tertiary amine compounds with ortho-phthalaldehyde and Perasafe. J. Hosp. Infect. 2006; (1): 73-8. https://doi.org/10.1016/j.jhin.2005.12.005

31. Rutala W.A., Weber D.J. Disinfection of endoscopes: review of new chemical sterilants used for high-level disinfection. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 1999; 20 (1): 69-76. https://doi.org/10.1086/501544

32. Walsh S.E., Maillard J-Y., Russell A.D., Hann A.C. Possible mechanisms for the relative efficacies of ortho-phthalaldehyde and glutaraldehyde against glutaradehyde-resistant Mycobacterium chelonae. J. Appl. Microbiol. 2001; 91 (1): 80-92. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2001.01341.x

33. Cooke R.P.D., Goddard S.V., Whymant-Morris A., Sherwood J., Chatterly R. An evaluation of Cidex OPA (0.55% ortho-phthalaldehyde) as an alternative to 2% glutaraldehyde for high-level disinfection of endoscopes. J Hosp Infect. 2003; 54 (3): 226-31. https://doi.org/10.1016/s0195-6701(03)00040-9


Для цитирования:


Скопин А.Ю., Гололобова Т.В., Матвеева Е.А., Иванова А.О. Совершенствование методических подходов к оценке эффективности дезинфекционного оборудования в системе обеспечения качества и безопасности эндоскопических вмешательств. Гигиена и санитария. 2019;98(12):1444-1450. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2019-98-12-1444-1450

For citation:


Skopin A.Yu., Gololobova T.V., Matveeva E.A., Ivanova A.O. Improvement of methodic approaches to the evaluation of disinfecting equipment efficiency in the system of quality and safety assurance for endoscopic interventions. Hygiene and Sanitation. 2019;98(12):1444-1450. (In Russ.) https://doi.org/10.47470/0016-9900-2019-98-12-1444-1450

Просмотров: 12


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0016-9900 (Print)
ISSN 2412-0650 (Online)