Preview

Гигиена и санитария

Расширенный поиск

СОВРЕМЕННЫЕ АСПЕКТЫ РЕШЕНИЯ ПРОБЛЕМЫ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ОБСЕМЕНЁННОСТИ РАЗЛИЧНЫХ СОСТАВЛЯЮЩИХ СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО ПРИЁМА

https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-8-743-749

Полный текст:

Аннотация

Введение. Идентичность микрофлоры очагов острой одонтогенной инфекции и дентина кариозных полостей обусловливает актуальность проблемы перекрёстной инфекции в стоматологии. Одной из составляющих этой проблемы является бактериальная обсеменённость зоны стоматологического лечения. В ходе исследования установлено, что в начале рабочего дня определяется достаточно низкий уровень бактериальной загрязнённости. Материал и методы. Материалом исследования явились результаты 27 проб микрофлоры воздуха стоматкабинета, 273 смывов со стоматологических наконечников и с поверхностей лечебной и нелечебной рабочих зон. Исследования воздуха проводились на общую бактериальную загрязнённость (КОЕ - колония образующие единицы) или общее микробное число (ОМЧ) с определением санитарно-показательных микроорганизмов (St. Aureus). Использовались аспирационный и седиметационный методы исследования. Исследование микробной загрязнённости поверхностей осуществлялось методом смывов, с определением ОМЧ и санитарно-показательных микроорганизмов (патогенная кокковая флора, бактерии группы кишечной палочки, синегнойная палочка). Результаты. Значение общего микробного числа минимально в группе исследования и недостоверно выше в контрольной группе. В середине рабочего дня микробное число достоверно возрастает в обеих группах, однако более выражен процесс в контрольной группе. К концу рабочего дня разница в увеличении общего микробного числа (ОМЧ) в контрольной группе и группе исследования статистически значима. Такая тенденция определятся и в отношении стоматологического инструментария, в частности стоматологических наконечников. Бактериальная загрязнённость поверхностей стоматологических наконечников достоверно увеличивается от начала к концу рабочего дня, причём степень увеличения микробного числа напрямую зависит от материала изготовления и метода стерилизации. Обсуждение. Результаты исследований показали, что введение новых санитарно-гигиенических стандартов содержания стоматологических наконечников является необходимой мерой защиты здоровья как пациента, так и медицинского работника. При использовании старых нормативов стоматологических изделий в течение рабочей смены увеличивается бактериальная обсеменённость медицинского оборудования, воды системы охлаждения наконечника и поверхности рабочей зоны врача. Однако по количественным показателям бактериальная загрязнённость исследуемых объектов была ниже при использовании наконечников фирмы W&H, чем у аналогичной отечественной продукции. Выводы. Введение новых, более жёстко регламентированных санитарно-гигиенических стандартов содержания стоматологических наконечников является научно обоснованным, а также необходимой мерой защиты здоровья как пациента, так и медицинского работника. Паровой автоклав группы В LISA показал высокую эффективность в стерилизационном процессе всех типов наконечников.

Об авторах

Богдан Романович Шумилович
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава РФ
Россия


В. П. Косолапов
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава РФ
Россия


В. В. Ростовцев
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава РФ
Россия


З. А. Филиппова
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава РФ
Россия


Список литературы

1. Авчинников А.В. Современные гигиенические подходы к проблеме внутрибольничных инфекций. Смоленск; 2014.

2. Венцел Р.П. Внутрибольничные инфекции (пер. с англ.). М.: Медицина; 1990.

3. Bonifait L., Chandad F., Grenier D. Probiotics for Oral Health: Myth or Reality? JCDA. 2009; 8 (75): 585-590.

4. Boehm T.K., Scannapieco F.A. The epidemiology, consequences and management of periodontal disease in older adults. J. Am. Dent. Assoc. 2007; 138: 26-33.

5. Paster В.J., Boches S., Galvin J., Lau C., Levanos V., Sahasrabudhe A., Dewhirst F. Bacterial diversity in human subgingival plaque. J. Bacteriol. 2001; 183: 3770-3783.

6. Bernath M., Szabo J. Tissue reaction initiated by different sealers. Int. Endod. J. 2003; 4 (36): 256-261.

7. Chopra R., Mathur S. Probiotics in dentistry: A boon or sham. Dent. Res. J. 2013; 10 (3): 302-306.

8. Genco R.J., Borgnakke W.S. Risk factors for periodontal disease. Periodontology. 2000; 1 (62): 59-94.

9. Griffen A.L. Prevalence of Porphyromonas gingivalis and periodontal health status. J. Clin. Microbiol. 1998; 11 (36): 3239-3242.

10. Paschal A.M., Hawley S.R., Romain T.S. Measures of adherence to epilepsy treatment: review of present practices and recommendations for future directions. Epilepsia. 2008; 49 (7): 1115-1122.

11. Petersilka G., Tunkel J., Barakos K., Heinecke A., Häberlein I., Flemmig T.F. Subgingival plaque removal at interdental sites using a low abrasive air polishing powder. Journal of Periodontology. 2003; 3 (74): 337-349.

12. Sanz M., Lang N.P., Kinane D.F., Berglundh T., Chapple I., Tonetti M.S. Seventh European Workshop on Periodontology of the European Academy of Periodontology at the Parador at la Granja, Spain. J. Clin. Periodontal. 2011; 11 (38): 11-23.

13. Zitzmann N.U., Sanz M., Janket Berglundh S.J. Definition and prevalence of peri-implant diseases. J. Clin. Periodontol. 2008; 35 (8 Suppl): 286-291.

14. Meurman J.H. Oral health, atherosclerosis and cardiovascular disease. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 2004; 6 (Vol. 15): 403-413.

15. Brett P.M., Zygogianni P., Griffiths G.S. Functional gene polymorphisms in aggressive and chronic periodontitis. J. Dent. Res. 2005; 12 (Vol. 84): 1149-1153.

16. Haffajee A.D., Bogren A., Hasturk H. Subgingival microbiota of chronic periodontitis subjects from different geographic locations. J. Clin. Periodontol. 2004; 31: 996-1002.

17. Messora M.R., Pereira L.J., Foureaux R., Oliveira L.F., Sordi C.G., Alves A.J., Napimoga M.H., Nagata M.J., Ervolino E., Furlaneto F.A. Favorable effects of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis on experimental periodontitis in rats. Arch. Oral. Biol. 2016; 6: 108-119.

18. Sabbah W., Sheihamn A., Bernabe E. Income inequality and periodontal diseases in rich countries: an ecological cross-sectional study. Int. Dent. J. 2010; 60: 370-374. Кроузер Д., Чиппинг Д. Контроль за перекрестной инфекцией в общей стоматологической практике (пер. с. англ.). М.: Медицинская книга; 1994.

19. Шумилович Б.Р., Кунин А.А. Морфологические аспекты одонтопрепарирования (исследование invitro): монография. Saarbrucken. Deutschland.: Omni Scriptum GmbH&Co.KG.; 2015.

20. Николаев А.И., Цепов Л.М., Михеева Е.А. Санитарно-гигиенический режим в терапевтических стоматологических кабинетах (отделениях). М.: МЕД-Пресс-информ; 2010.

21. Park Y.W. Bioactive Components in Milk and Dairy Products. Singapore: Wiley-Blackwell; 2009.

22. Aartman I.H., de Jough A., Makkes P.C., Hoogstraten J. Dental anxiety reduction and dental attendance after treatment in a dental fear clinic: a follow-up study. Community Dental Oral Epidemiology. 2000; 6 (Vol. 28): 435-442.

23. Daschner F., Marget W. Treatment of recurrent urinary tract infection in children. II. Compliance of parents and children with antibiotic therapy regimen. Acta Paediatr. Scand. 1975; 1: 105-108.

24. Driffield K., Miller K., Bostock J.M., O’Neill A.J., Chopra I. Increased mutability of Pseudomonas aeruginosa in biofilms. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2015; 61 (5): 1053-1056.

25. Chen C.J. Periodontitis as a biofilm infection. Calif. Dent. Assoc. 2001; 5 (Vol. 29): 362-369.

26. Ojima M., Hanioka T., Shizukuishi S. Survival analysis for degree of compliance with supportive periodontal therapy. J. Clin. Periodontol. 2001; 28: 1091-1095.

27. Schwarz I. The Vector-system: An Ultrasonic Device for Periodontal Treatment. Perio. 2004; 1 (Issue 2): 181-189.

28. Паничева С.А. Новые технологии дезинфекции и стерилизации сложных изделий медицинского назначения. М.: ВНИИИМТ; 2008.

29. Eick S., Bender P., Flury S. at al. In vitro evaluation of surface roughness, adhesion of periodontal ligament fibroblasts, and streptococcus gorgonii following root instrumentation with Gracey Curettes and subsequent polishing with diamond-coated curettes. Clin. Oral. Investig. 12; 17: 112-128.

30. Mattila K.J. Pussinen P.J. Dental infections and cardiovascular diseases. London: О. Periodontol; 2005.

31. Schwarz F., Ferrari D., Popovski K., Hartig B., Becker J. Influence of different air abrasive powders on cell viability at biologically contaminated titanium surfaces. J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. 2009; 88 (1): 83-91.

32. Yan C., Boyd D.D. Regulation of matrix metalloproteinase gene expression. J. Cell. Phisiol. 2007; 211: 19-26.

33. Паничева С.А. Новые технологии дезинфекции и стерилизации сложных изделий медицинского назначения. М.: ВНИИИМТ; 2008.

34. СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность». Available at: http://files.stroyinf.ru/Data2/1/4293818/4293818620.htm

35. Dreno B., Reynaud A., Moyse D., Habert H., Richet H. Erythromycin-resistance of cutaneous bacterial flora in acne. Eur. J. Dermatol. 2001; 11(6): 549-553.

36. Gascon J.J., Sanchez-Ortuno M., Llor B. Treatment Compliance in Hypertension Study Group. Why hypertensive patients do not comply with the treatment: results from a qualitative study. Farm. Pract. 2004; 21: 125-130.

37. Godson I.M. Antimicrobial strategies for treatment of periodontal diseases. Periodontal. 2000; 5: 142-168.

38. Jean-Francois Roulet, Stefan Zimmer. Профессиональная профилактика в практике стоматолога. М.: Азбука; 2010.

39. Penala S., Kalakonda B., Pathakota K.R., Jayakumar A., Koppolu P., Lakshmi B.V., et al. Efficacy of local use of probiotics as an adjunct to scaling and root planning in chronic periodontitis and halitosis: A randomized controlled trial. J. Res. Pharm. Pract. 2016; 5 (2): 86-93.

40. Riccia D.N., Bizzini F., Perilli M.G., Polimeni A., Trinchieri V., Amicosante G., Cifone M.G. Anty-inflammatory effects of Lactobacillus brevis (CD2) on periodontal disease. Oral. Dis. 2007; 4 (Vol. 13): 376-385.

41. Sukontapatipark W., Agroudi M.A., Selliseth N.J. Bacterial colonization associated with fixed orthodontic appliances: a scanning electron microscopy stud. Eur. J. Orthod. 2001; 5: 475-484.

42. Шумилович Б.Р., Шишкин А.В. Проблемы бактериальной обсемененности различных составляющих стоматологического приема (пути решения на примере использования автоклава класса стерилизации В «LISA» производства компании W&H Dentalwerk, Австрия). Экономика и менеджмент в стоматологии. 2011; 34 (2): 26-32.

43. Heinrich A., Dengler K., Koerner T. et al. Lazernoe modificirovanie titanovyh implantatov s cel’ju uluchshenija kletochnoj adgezii. Majestro stomatologii. 2010; 3: 67-70. (in Russian)


Для цитирования:


Шумилович Б.Р., Косолапов В.П., Ростовцев В.В., Филиппова З.А. СОВРЕМЕННЫЕ АСПЕКТЫ РЕШЕНИЯ ПРОБЛЕМЫ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ОБСЕМЕНЁННОСТИ РАЗЛИЧНЫХ СОСТАВЛЯЮЩИХ СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО ПРИЁМА. Гигиена и санитария. 2018;97(8):743-749. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-8-743-749

For citation:


Shumilovich B.R., Kosolapov V.P., Rostovtsev V.V., Filippova Z.A. MODERN ASPECTS OF THE SOLUTION OF THE PROBLEM OF BACTERIAL SEEDNESS OF VARIOUS COMPONENTS OF THE DENTAL RECEPTION. Hygiene and Sanitation. 2018;97(8):743-749. (In Russ.) https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-8-743-749

Просмотров: 4


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0016-9900 (Print)
ISSN 2412-0650 (Online)