CYTOGENETIC CONSEQUENCES OF COMPREHENSIVE IMPACT OF DRUGS AND ENVIRONMENTAL GENOTOXICANTS (ON EXAMPLE OF CEFTRIAXONE AND PB (II)) ON THE ORGANISM AND THE POSSIBILITY OF THEIR ANTIMUTAGENIC CORRECTION

On fruit fly, Drosophila melanogaster there was studied the possibility of antimutagenic correction of factors simulating exogenous xenobiotics, potentially dangerous for humans: lead compounds (II) and the drug ceftriaxonum, and their combinations. Research on the criterion of accounting the dominant lethal mutations (according to P.Ya. Shvarzman) showed (Pb (II) 10-5 M, ceftriaxonum 0,008 g per 100 g the nutrient medium) in studied doses to give rise correspondingly the gain in the frequency of occurring mutations de novo in generative cells by 3.8 and 5.9 times (relatively to the spontaneous level). Co-administration of these substances (at same doses) fails to cause synergistic effects: the frequency of lethal dominants in the experimental group relatively to the level of intact male fruit flies increases by 7.4 times. The aqueous extract of grass Amaranthus retroflexus L. (at a dosage of 0.43 ml per 100 g of the nutrient medium) had pronounced antimutagenic effect. The portion of mutations induced by lead ions was diminished by 54.4%, in the case of ceftriaxonum - by 37.4%, indicating to a specific antioxidant jugulating of free radical mutagenesis. Against the background of the combined effects of both the extent of damaging factors the antimutagenic activity of the complex of biologically active substances from Amaranthus retroflexus L. appeared to be the greatest - 70.7%. Various variants of the experiment simulating the conditions of the prevention or treatment (Amaranthus r. infusion before or after administration of the complex mutagens, respectively) showed a pronounced effect in both cases. In the case of preventive protection of the genome the degree of jugulating of adverse manifested symptoms was 70.7%, and in the case of possible treatment options - 68.8%. In this aspect, it is appropriate the further investigation of biologically active substances from Amaranthus r. L. with the aim to isolate of the spectrum of the most active compounds against exogenous xenobiotics and their introduction in the pharmacological practice.

амарант запрокинутый (Amaranthus retroflexus L.), антимутаген, доминантные летальные мутации, мутаген, свинец, цефтриаксон, Amaranthus retroflexus L, antimutagen, ceftriaxone, lead, mutagen, dominant lethal mutations, ceftriaxonum

1. Захаров В.М., ред. «Горячие точки» химического загрязнения окружающей среды и здоровье населения России. М.: Акрополь; 2007.

2. Абилев С.К. Химические мутагены и генетическая токсикология. Природа. 2012; (10): 39-46.

3. Рапопорт И.А. Открытие химического мутагенеза: Избранные труды. М.: Наука; 1993.

4. Балахонов А.В. Ошибки развития. Ленинград: Ленинградский университет; 1990.

5. Меркулова Н.А. Влияние загрязнения среды обитания на здоровье. Владикавказ; 2013.

6. Рамонова Р.А., Чопикашвили Л.В., Пухаева Е.Г. Цитогенетические эффекты ацетата свинца и лекарственного препарата циклофосфана в клетках костного мозга млекопитающих и их коррекция биологически активными веществами настоя клевера лугового (Trifolium pratense). Владикавказский медико-биологический вестник. 2012; 14(22): 68-73.

7. Чопикашвили Л.В., Корноухова И.И., Калабеков А.Л. Оценка генетической безопасности биологически активных веществ топинамбура на различных тест-системах. Известия Горского государственного аграрного университета. 2013; 50(3): 283-93.

8. Гагкаева З.В., Чопикашвили Л.В., Пухаева Е.Г. Поиск БАВ для коррекции индуцированного мутагенеза экополлютантов (Cd I2) РСО-А. Аллергология и иммунология. 2013; 14(2): 162-3.

9. Чопикашвили Л.В., Пухаева Е.Г., Тедеева Ф.Г. Цитогенетический эффект ацетата свинца и йодида кадмия в тест-системе Drosophila melanogaster на фоне терапевтических доз диоксидина цитостатического препарата циклофосфана и его коррекция настоем клевера лугового Trifolium pratense L. (местная флора альпийских лугов). Вестник Международной академии наук экологии и безопасности жизнедеятельности. 2011; 16(2): 34-40.

10. Зангиева М.С., Дзагоева Л.В., Чопикашвили Л.В., Пухаева Е.Г., Фарниева Ж.Г. Оценка антимутагенной активности Гинкго билоба на фоне циклофосфана в клетках костного мозга млекопитающих. В кн.: Тезисы докладов VIII Международного конгресса по реабилитации в медицине и имммунореабилитации и VI Всемирного форума по астме и респираторной аллергии. М.: Медицина-Здоровье; 2013.

11. Ren W., Qiao Z., Wang H., Zhu L, Zhang L. Flavonoids: Promising Anticancer Agents. Med. Res. Rev. 2003; 23(4): 519-34

12. Уткина Е.А. Зависимость антиоксидантной активности флавоноидов от физико-химических характеристик в различных системах: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. М.; 2005.

13. Тараховский Ю.С., Ким Ю.А., Абдрасилов Б.С., Музафаров Е.Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино; 2013.

14. Шварцман П.Я., Ильясов Ю.И., Савина В.А. Изучение частоты доминантно-летальных мутаций, индуцированных рентгеновскими лучами на различных стадиях сперматогенеза дрозофилы. Вестник Московского государственного университета. Серия Биология. 1991; (3): 128-39.

15. Хабриев Р.У., ред. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Медицина; 2005.

16. Изюмов Ю.Г., Литвинова Е.М., Шварцман П.Д. Реализация повреждений, индуцированных этиленимином на разных стадиях сперматогенеза. Сборник научных трудов. Ленинград: ЛГПИ им. А.И. Герцена; 1974: 64-70.

17. Гульшина В.А. Биология развития и особенности биохимического состава сортов амаранта (Amaranthus L.) в центрально-черноземном регионе России: Автореф. дисс.. канд. биол. наук. М.; 2008.

18. Баранов Т.В., Соколенко Г.Г. Исследования антиоксидантной активности амаранта в условиях центрально-черноземного региона. Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. 2012; (7): 24-7.

19. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа; 1990.

20. Прохорова И.М., Ковалева М.И., Фомичева А.Н. Пространственная и временная динамика мутагенной активности воды оз. Неро. Биология внутренних вод. М.: Наука; 2008.

21. Perron N.R., Brumaghim J.L. A review of the antioxidant mechanisms of polyphenol compounds related to iron binding. Cell. Biochem. Biophys. 2009; 53(2): 75-100.

22. Malesev D.M., Kuntic V. Investigation of metal-flavonoid chelates and the determination of flavonoids via metal-flavonoid complexing reactions. J. Serb. Soc. 2007; 72: 921-39.

23. Kostyuk V.A., Potapovich A.I., Kostyuk T.V., Cherian M.G. Metal complexes of dietary flavonoids: evaluation of radical scavenger properties and protective activity against oxidative stress in vivo. Cell. Mol. Biol. (Noisy-le-grand). 2007; 53(1): 62-9.

24. Костюк В.А., Потапович А.И. Биорадикалы и биоантиоксиданты. Минск: БГУ; 2004: 145-51.

25. Чопикашвили Л.В., Пухаева Е.Г., Руруа Ф.К., Фарниева Ж.Г., Скупевский С.В. Оценка мутагенного эффекта лекарственного препарата немозол на фоне ацетата свинца в тест-системе Drosophila melanogaster и его коррекция настойкой Гинкго билоба. Владикавказский медико-биологический вестник. 2013; 16: 51-5.