Preview

Гигиена и санитария

Расширенный поиск

Микроядерный тест на клетках буккального эпителия и культуре крови человека: сравнение эффективности

https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-12-1244-1248

Полный текст:

Аннотация

Для выявления мутагенной опасности различных факторов для человека чаще всего используются тесты по учёту микроядер в культивированных с цитохалазином Б лимфоцитах периферической крови человека и/или в эпителиоцитах слизистой оболочки щеки. Тест на эпителиоцитах неинвазивный и несопоставимо легче в сборе и фиксации материала. Видимо поэтому имеется достаточное количество публикаций результатов метаанализа сравнений этих тестов, в которых доказывается возможность их взаимозамены. Целью настоящей работы является проверка гипотезы о взаимозаменяемости МТ на лимфоцитах и эпителии слизистой оболочки щеки путем сравнения их эффективности (по наличию/отсутствию эффекта). Мы отбирали публикации из массива данных по оценке любых факторов — от заболеваний до производственных и бытовых вредностей, но только тех, в которых у одних и тех же добровольцев брали и кровь для культивирования, и соскоб эпителия щеки. Исследования с отрицательным ответом на обеих тканях по сравнению с контрольной группой были исключены из рассмотрения. Наш анализ показал, что при оценке 30 различных факторов, воздействующих на человека, положительный результат на обеих тканях был получен для 17 факторов, только на лимфоцитах крови человека — для 7 факторов, и только на эпителии щеки — для 6 факторов. Кроме того, помимо указанных сравнений, в цитируемых статьях проявляются особенности каждого метода и проблемы, связанные с интерпретацией результатов, полученных в каждом из них. Для большей надежности выявления мутагенных факторов в генетико-гигиенических исследованиях представляется целесообразным использовать оба теста.

Об авторах

В. В. Юрченко
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия


Е. К. Кривцова
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия


Н. А. Юрцева
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия


Фаина Исааковна Ингель
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Доктор биол. наук, и.о. зав. лаб. генетической токсикологии Института экологии человека и гигиены окружающей среды им. А.Н. Сысина ФГБУ «ЦСП» Минздрава России.

e-mail: fainaingel@mail.ru



Список литературы

1. Fenech M., Chang W. P., Kirsch-Volders M., Holland N., Bonassi S., Zeiger E. 2003. HUMN project: detailed description of the scoring criteria for the cytokinesis-block micronucleus assay using isolated human lymphocyte cultures. Mutation Research. 534 (1-2): 65-75.

2. Ladeira C., Viegas S., Carolino E., Prista J., Gomes M. C., Brito M. 2011. Genotoxicity biomarkers in occupational exposure to formaldehyde - the case of histopathology laboratories. Mutation Research. 721 (1): 15-20.

3. Holland N., Bolognesi C., Kirsch-Volders M., Bonassi S., Zeiger E., Knasmueller S., Fenesh M. 2008. The micronucleus assay in human buccal cells as a tool for biomonitoring DNA damage: The HUMN project perspective on current status and knowledge gaps. Mutation Research. 659: 93-108.

4. Holland N., Harmatz P., Golden D., Hubbard A., Wu Y.-Y., Bae J., Chen C., Huen K., Heyman M. B. 2007. Cytogenetic damage in blood lymphocytes and exfoliated epithelial cells of children with inflammatory bowel disease. Pediatric Research. 61: 209-214.

5. Topinka J., Sram R. J., Sirinjan G., Kocisova J., Binkova B., Fojtikova I. Mutаgenicity studies on paracetamol in human volunteers. II. Unsheduled DNA synthesis and micronucleus test. Mutation Research. 1989. 223 (3): 147-152.

6. Sarto F., Tomanin R., Giacomelli L., Canova A., Raimondi F., Ghiotto C., Fiorentino M.V. 1990. Evaluation of chromosomal aberrations in lymphocytes, oral mucosa and hair root cells of patients under antiblastic therapy. Mutation Research. 228: 157-169.

7. Moore L. E., Warner M. L., Smith A. H., Kalman D., Smith M. T. 1996. Use of the fluorescent micronucleus assay to detect the genotoxic effects of radiation and arsenic exposure in exfoliated human epithelial cells. Environmental and Molecular Mutagenesis. 27 (3): 176-184.

8. Юрченко В. В. 2007. Микроядерный тест на гепатоцитах. В кн. Полиорганный микроядерный тест в эколого-гигиенических исследоаниях. М., Гениус, 43-87.

9. Юрченко В. В., Ингель Ф. И., Кривцова Е. К., Юрцева Н. А., Ревазова Ю. А. 2009. Оценка мутагенной активности Акрепа на трех тканях млекопитающих. Токсикол. вестник. 5: 15-18.

10. Ceppi M., Biasotti B., Fenech M., Bonassi S. Human population studies with the exfoliated buccal micronucleus assay: Statistical and epidemiological issues, 2010. Mutation Research. 705: 11-19

11. Худолей В. В. Канцерогены: характеристики, закономерности, механизмы действия. СПб: НИИ Химии СПбГУ. 1999.419 с

12. Yildirim I. H., Yesilada E., Yologlu S. Micronucleus frequency in peripheral blood lymphocytes and exfoliated buccal cells of untreated cancer patients. Russian Journal of Genetics. 2006. 42 (5): 705-710.

13. Burgas S., Coskun E., Demircigil G. C., Kocabas N. A., Cetindag F., Sunter O., Edinsel H. 2011. Micronucleus frequencies in lymphocytes and buccal epithelial cells from patients having head and neck cancer and their first-degree relatives. Mutagenesis. 26 (2): 351-356.

14. Demircigil G. C., Aykanat B., Fidan K., Bayrakci U. S., Buyukkaragoz B., Karakayali H., Haberal M., Baskin N., Buyan N., Burgas S. 2010. Genotoxicity assessment by micronucleus assay in peripheral blood lymphocytes and buccal epithelial cells of children with chronic kidney disease. Toxicological Letters. 196. Suppl. S. 168.

15. Saruhanoglu A., Ergun S.,Kaya M., Warnakulasuriya S., Erbagci M., Ozturk S., Deniz E., Ozel S., Cefle K., Palanduz S., Tanyeri H. 2013. Evaluation of micronuclear frequencies in both circulating lymphocytes and buccal epithelial cells of patients with oral lichen planus and oral lichenoid contact reactions. Oral Diseases. 20: 521-527.

16. Hamurcu Z., Donmez-Altuntas H., Borlu M., Demertas H., Ascioslu O. 2005. Micronucleus frequency in the oral mucosa and lymphocytes of patients with Behcet’s disease. Clinical and Experimental Dermatology. 30: 565-569.

17. Tomanin R., Sarto F., Mazzotti D., Giacomelli L., Raimondi F., Trevisan C. 1990. Louis-Bar syndrome: spontaneous and induced chromosomal aberrations in lymphocytes and micronuclei in lymphocytes, oral mucosa and hair root cells. Hum. Genet. 85: 31-38.

18. Migliore L., Coppede F., Fenech M., Thomas P. 2011. Association of micronucleus frequency with neurodegenerative diseases. Mutagenesis. 26 (1): 85-92.

19. Tomas P., Harvey S, Gruner T., Fenesh M. the buccal cytome and micronucleus frequence is substantially altered in Down' syndrome and normal ageing compared to young healthy control. Mutation Research. 638: 37-47.

20. Minicucci E. M., Ribeiro D. A., de Camargo B., Costa M. C., Ribeiro L.R., Favero Salvadori D. M. 2008. DNA damage in lymphocytes and buccal mucosa cells of children with malignant tumours undergoing chemotherapy. Clinical and Experimental Medicine. 8 (2): 79-85.

21. Burgas S., Karahalil B., Bayrak P, Taşkın L, Yavuzaslan F, Bökesoy I, Anzion R.B.M., Bos R.P., Platin N. 1999. Urinary cyclophosphamide exretion and micronuclei in peripheral lymphocytes and in exfoliated buccal cells of nurses handling antineoplastics. Mutation Research. 439 (1): 97-104.

22. Rechadevi P. V., Sailaj N., Chandrasekhar M., Mahboob M., Rahman M. F., Grover P. 2007. Genotoxicity assessment in oncology nurses handling anti-neoplastic drugs. Mutagenesis. 22 (6): 395-401.

23. Cavallo D., Ursini C. L., Perniconi B., Francesco A. D., Giglio M., Rubino F. M., Marinaccio A., Iavicoli S. 2005. Evaluation of genotoxic effects induced by exposure to antineoplastic drugs in lymphocytes and exfoliated buccal cells of oncology nurses and pharmacy employees. Mutation Research. 587(1-2): 45-51.

24. Cavallo D., Ursini C. L., Omodeo-Sale E., Iavicoli S. 2007. Micronucleus induction and FISH analysis in buccal cells and lymphocytes of nurses administering antineoplastic drugs. Mutation Research. 628 (1): 11-18.

25. Cavallo D., Ursini C. L., Rondinone B., Iavicoli S. 2009. Evaluation of a suitable DNA damage biomarker for human biomonitoring of exposed workers. Environmental and Molecular Mutagenesis. 50 (9): 781-90.

26. Lewinska D., Palus J., Stepnik M., Dziubaltowska E., Beck J., Rydzynski K., Natarajan A. T., Nilsson R. 2007. Micronucleus frequency in peripheral blood lymphocytes and buccal mucosa cells of copper smelter workers, with special regard to arsenic exposure. International Archive of Occupational Environmental Health. 80 (5): 371-380.

27. Pitarque M., Vaglenov A., Nosko M., Pavlova S., Petkova V., Hirvonen A., Creus A., Norppa H., Marcos R. 2002. Sister chromatid exchanges and micronuclei in peripheral lymphocytes of shoe factory workers exposed to solvents. Environ. Health Perspect. 110 (4): 399-404.

28. Gonzales-Yebra A.L., Kornhauser C., Barbosa-Sabanero G., Perez-Luque E.L., Wrobel K. 2009. Exposure to organic solvents and cytogenetic damage in Exfoliated cells of the buccal mucosa from shoe workers. International Archive of Occupational and Environmental Health. 82 (3): 373-380.

29. Grover P., Rechadevi P. V., Danadevi K., Vuyyuri S. B., Mahboob M., Rahman M. F. 2010. Genotoxicity evaluation in workers occupationally exposed to lead. International Journal for Hygiene and Environmental Health. 213 (2): 99-106.

30. Chinde S., Kumari M., Devi K. R., Murty U. S., Rahman M. F., Kumari S. I., Mahboob M., Grover P. 2014. Assesment of genotoxic effects of lead in occupationally exposed workes. Environmental Science and Pollution Research. 21 (19): 11469-11480.

31. Cassini C., Calloni C., Bortoloni G., Garcta S.C., Dornelles M. A., Henriques J.A.P., Erdtmann B., Salvador M. 2011. Occupational risk assessment of oxidative stress and genotoxicity in workers exposed to paints during a working week. International Journal of Occupational Medicine and Environmental Health. 24 (3): 308-319.

32. Diaz S., Fonseca G., Fernandes I. 1990. Analysis of lymphocytes and oral mucosa cell micronuclei in Cuban paint industry workers. Hereditas. 113: 77-80.

33. Benova D., Hadjidekova V., Hristova R., Nikolova T., Boulanova M., Georgieva I., Grigorova M., Popov T., Panev T., Georgieva R., Natarajan A. T., Darroudi F., Nilsson R. 2002. Cytogenetic effects of hexavalent chromium in Bulgarian chromium platers. Mutation Research. 514 (1-2): 29-38.

34. Goud K. I., Hasan Q., Balakrishna N., Rao K. P., Ahuja Y. R. 2004. Genotoxicity evaluation of individuals working with photocopying machines. Mutation Research. 563(2): 151-158.

35. Rohr P., da Silva J, da Silva F. R., Sarmento M., Porto C., Debastiani R., dos Santos S. E. I., Dias J. F., Kvitko K. 2013. Evaluation of genetic damage in open-cast coal mine workers using the buccal micronucleus cytome assay. Environ. Mol. Mutagenesis. 54: 65-71.

36. Rohr P., Kvitko K., da Silva F. R. Menezes A. P. S., Porto C., Sarmento M., Decker N., Reyes J. M., Allgayer M da C., Furtado T. C., Salvador M., Branco C. 2013. Genetic and oxidative damage of peripheral blood lymphocytes in workers with occupational exposure to coal. Mutation Research. 758 (1-2): 23-28.

37. Ribeiro L.R., Salvadori D. M., Rios A. C., Costa S. L., Tates A. D., Tornqist M., Natarajan A. T. 1994. Biological monitoring of workers occupationally exposed to ethylene oxide. Mutation Research. 313: 81-87.

38. Ying C.J., Yan W. S., Zhao M. Y., Ye X. L., Xie H., Yin S.Y., Zhu X. S. 1997. Micronuclei in nasal mucosa, oral mucosa and lymphocytes in students exposed to formaldehyde vapor in anatomy class. Biomedical Environmental Sciences. 10 (4): 452-455.

39. Suruda A., Schulte P., Boeniger M., Hayes R.B., Livingston G.K., Steenland K., Stewart P., Herrick R., Douthit D., Fingerhut M.A. 1993. Cytogenetic effects of formaldehyde exposure in students of mortuary science. Cancer Epidemiology, Biomarkers and Prevention. 2 (5): 453-460.

40. Viegas S., Ladeira C., Nunes C., Malta-Vacas, Gomes M., Brito M., Mendonca P., Prista J. 2010. Genotoxic effects in occupational exposure to formaldehyde: A study in anatomy and pathology laboratories and formaldehyde-resins production. Journal of occupational medicine and toxicology. 5: 25 http://www.occup-med.com/comtent/5/1/25.

41. Dönbak L., Celik M., Demirhan I., Nagas S. 2007. Genotoxic damage in Maras powder consumers from Kahramanmaras province of Turkey. Genetika. 43 (5): 633- 638.

42. Saatci C., Ozkul Y., Tahiri S., Caglayan A.O., Turhan A.B., Dundar M. 2008. The effect of maras powder on DNA methylation and micronucleus formation in human buccal tissue. Journal of Toxicology and Environmental Health. 71(6): 396-404.

43. Zamani A. G., Durakbasi-Dursun H. G., Demirel S., Acar A. 2011. Evaluation of smoking genotoxicity in Turkish yang adults. Indian J Hum Genet. 17 (1): 7-12.

44. Silveira H. C. S., Schmidt-Carrijo M., Seidel E. H., Scapulatempo-Neto C., Longatto-Filho A., Carvalho A. L., Reis R. M. V., Saldva P. H. N. 2013. Emission generated by sugarcane burning promote genotoxicity in rural workers: a case study in Barretos, Brazil. Environmental Health. 12: 87- 92.

45. Ghosh P., Basu A., Singh K. K., Giri A. K. 2008. Evaluation of cell types for assessment of cytogenetic damage in arsenic exposed population. Molecular Cancerogenesis. 7: 45. doi:10.1186/1476-4598-7-45.

46. Chen C., Arjomandi M., Oin H., Balmes J., Tager I., Holland N. Cytogenetic damage in buccal epithelia and peripheral lymphocytes of yang healthy individuals exposed to ozone. 2006. Mutagenesis. 21 (2): 131-137.

47. Huen K., Gunn L., Duramad P., Jeng M., Scalf R., Holland N. 2006. Application of geographic information system to explore associations between air pollution and micronucleus fraquencies in African American children and adults. Environmental and Molecular Mutagenesis. 47 (4): 236-246.

48. Thomas P., Wu J., Dhillon V., Fenech M. 2011. Effect of dietary intervention on human micronucleus frequency in lymphocytes and buccal cells. Mutagenesis. 26 (1): 69-76.

49. Pastor S., Gutierres S., Creus A., Cebulska-Wasilewska et al. 2001. Micronuclei in peripheral blood lymphocytes and buccal epithelial cells of Polish farmers exposed to pesticides. Mutation Research. 495 (1-2): 147-156.

50. Pastor S., Gutierres S., Creus A., Xamena N., Piperakis S.,Marcos R. 2001. Cytogenetic analysis of Greek farmers using the micronucleus assay in peripheral lymphocytes and buccal cells. Mutagenesis. 16 (6): 539-545.

51. Waldmann T. A., Misiti J., Nelson D. L., Kraemer K. H. 1983. Ataxia-telangiectasia: a multisystem hereditary disease with immunodeficiency, impaired organ maturation, X-ray hypersensitivity and a high incidence of neoplasia. Annals of Internal Medicine. 99: 367-379.

52. Suspiro A., Prista J. 2011. Biomarkers of occupational exposure do anticancer agents: A minireview. Toxicol. Lett. 207: 42-52.


Рецензия

Для цитирования:


Юрченко В.В., Кривцова Е.К., Юрцева Н.А., Ингель Ф.И. Микроядерный тест на клетках буккального эпителия и культуре крови человека: сравнение эффективности. Гигиена и санитария. 2018;97(12):1244-1248. https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-12-1244-1248

For citation:


Yurchenko V.V., Krivtsova E.K., Urtseva N.A., Ingel F.I. Comparison of an efficiency between micronucleus test in buccal epithelial cells and cultured human blood lymphocytes. Hygiene and Sanitation. 2018;97(12):1244-1248. (In Russ.) https://doi.org/10.47470/0016-9900-2018-97-12-1244-1248

Просмотров: 49


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0016-9900 (Print)
ISSN 2412-0650 (Online)